PLAGAS
CONTROL BIOLOGICO DE PLAGAS
El control biológico es un
método de control que consiste en utilizar organismos vivos con
objeto de controlar las poblaciones de otro organismo.
Hay que tener en cuenta que su uso ha tenido significados diferentes a lo largo
del tiempo; así, los Fito patólogos han tendido a usar el
término para denotar métodos de control que incluyen
rotación de cultivos, alteraciones del pH del suelo, uso de enmiendas
organicas, etc.
Los controladores biológicos existen de forma natural
en el medio ambiente, asociados a las plagas que afectan diversos cultivos,
pero sus poblaciones son mucho menos numerosas que las de las plagas lo que los
beneficia ya que son los mas afectados cuando se aplican insecticidas.
Actualmente existen en el Perú alrededor de 120 laboratorios dedicados a
la producción de biocontroladores de distintas especies, los cuales son
libertados en los cultivos utilizando métodos de facil
manipulación para los agricultores
Por mucho tiempo se usaron los insecticidas pero nunca fueron tan eficientes
como esta nueva practica biológica de plagas.
VENTAJAS Y DESVENTAJAS DEL CONTROL BIOLOGICO DE PLAGAS
El control biológico cuando funciona entrelas que se pueden destacar:
El control biológico con frecuencia a largo tiempo es permanente
Evita plagas secundarias
No existen problemas con intoxicaciones
La relación con el ambiente es muy favorable
Unas de sus desventajas son las siguientes:
Ignorancia sobre los principios del método
Falta de apoyo económico
Falta de personal especializado
Enemigos naturales mas susceptibles a los plaguicidas de las plagas
El beneficio del control biológico se puede valorar en términos
de éxito, un éxito se obtiene cuando se utiliza el control
biológico contra una plaga importante y sobre un area extensa a
tal grado que las aplicaciones de insecticidas se vuelvan raras.
En la región Arequipa existen dos zonas principales de producción
de olivos y presentan 4 plagas que son: margaronia, mosca blanca,
olivícola y serrulata
Estas plagas tienen como característica alimentarse a través de
la succión de la savia de las hojas de olivo y como consecuencia de la
alimentación, excretan una mielecilla que se fusiona con el polvo de las
hojas y con un hongo llamado fumagina que se encuentra en el ambiente.
Para cada una de las plagas hay que usar cierto
preventivo o ciertos pasos para poderla extinguir ya que cada una es diferente
se pueden poner hongos organicos, realizar podas de luminosidad,
realizar lavados con presión, utilizar trampas o paneles de
plastico amarillo.
Enseguida se presentan los diferentes tipos de leucocitos:
• NEUTROFILOS.
Cuando la cifra de neutrófilos absolutos es de 1.5 X 109/L,
se habla de neutropenia; cuando la cantidad es mayor a 7.0 X 109/L, se habla de
neurofilia. (5
• EOSINÓFILOS.
Existen varias causas de eosinofilia (enfermedades alérgicas, infestaciones por
parasitos, enfermedades infecciosas, padecimientos cutáneos, enfermedades
gastrointestinales, enfermedades hematológicas.) se describe que los pacientes
con síndrome de Cushingtienen eosinopenia, pero, si se acepta que es normal que
en una cuenta diferencial no haya eosinófilos.
• BASÓFILOS.
Las causas de basofilia son leucemia mieloide crónica, polisitemia vera,
metaplasia mieloide, enfermedad de Hodgkin, anemía hemolítica crónica , sinusitis crónica, varicela, mixedema, síndrome
nefrotico, el posoperatorio a esplenectomía, etc.
• LINFOCITOS.
Las causas de linfocitosis son varias casi todas infecciosas.
(6
• MONOCITOS.
Cuando la cuenta absoluta de monocitos excede de 500/uL (0.5 X 109/L) se habla
de monocitosis cuyas causas son : leucemias, tuberculosis metaplacia mieloide
acnogénica, polisitemia vera, enfermedad de Hodking linfomas malignos,
teusarismosis, recuperación de daño medular por radiaciones o por medicamentos,
paludismo, kala-azar, tripanosomiasis, rickettsiasis, endocarditis infecciosa,
brucelosis, colitis ulcerosa, enteritis regional, sarcoidosis, padecimientos
autoinmunitarios, etc. (7)
MATERIAL:
Jeringa y aguja
Ligadura
Algodón con alcohol
Portaobjetos
Puente de coloración
Colorante de Wright
Buffer de fosfatos pH 6.4
Aceite de inmersión
Microscopio
METODO:
1.- Seleccionar un portaobjetos nuevo de 25 x 75 mm para hacer extendidos, que
tenga la orilla relativamente lisa.
2.- Colocar una pequeña gota de sangre en la orilla de
un portaobjetos limpio y seco. Colocar el portaobjetos para hacer un extendido en un ángulo de 30 a 45 grados con respecto al
portaobjetos que tiene la muestra y hacer contacto con la gota. Esta debe
extenderse rápidamente a lo largo de la orilla del portaobjetos
para hacer los extendidos. Deslizar elportaobjetos de
extensión sobre la superficie dispersando la muestra de sangre. El
portaobjetos de extensión no se despegará hasta haber
extendido toda la sangre. El grueso del
extendido de sangre puede regularse modificando el ángulo del portaobjetos extensión, variando el
tamaño de la gota de sangre, la presión o la velocidad de extensión.
3.- El extendido de sangre se seca al aire. Una vez
seco, se escribe con lápiz el nombre del
paciente en una orilla del
portaobjetos.
4.- Cubrir el portaobjetos completamente con el
colorante de Wright, dejándolo 5 minutos (el tiempo varia en cada lote de
colorante).
5.-añadir el amortiguador y, sin tirar el colorante, soplar
ligeramente para mezclar uniformemente. Dejar 7 minutos (aparecerá un brillo metálico verde), (el tiempo varía en cada lote de
colorante).
6.- Enjuagar cuidadosamente con agua de la llave ó
amortiguador de fosfatos, para eliminar todo el exceso de colorante.
7.- Dejar secar al aire en posición inclinada.
8.- Limpiar con un algodón con alcohol la parte
posterior del
portaobjetos para quitar el exceso de colorante.
9.- Observar en el microscopio con objetivo de
inmersión e identificar cuando menor 100 Leucocitos y reportar estos valores en
porcentaje.
NOTA!: durante la realización de esta practica existió controversia en base a
los tiempos de tinción por lo que se decidió que cada mesa ocuparía uno
distinto, a la mesa 1 le correspondió 6 minutos con colorante de Wright y 3
minutos con sol. Buffer.
RESULTADOS
Los resultados esperados en la tinción serán los siguientes:
ï¶ Hematíes en color rosa
ï¶ Núcleos de los Leucocitos de azulpurpura, con la cromatina y netamente
diferenciadas.
¶ Gránulos neutrófilos del citoplasma, lila ó violeta.
¶ Gránulos eosinófilos, rojo tirando a naranja
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