PLAGAS

CONTROL BIOLOGICO DE PLAGAS
El control biológico es un método de control que consiste en utilizar organismos vivos con objeto de controlar las poblaciones de otro organismo.
Hay que tener en cuenta que su uso ha tenido significados diferentes a lo largo del tiempo; así, los Fito patólogos han tendido a usar el término para denotar métodos de control que incluyen rotación de cultivos, alteraciones del pH del suelo, uso de enmiendas organicas, etc.

Los controladores biológicos existen de forma natural en el medio ambiente, asociados a las plagas que afectan diversos cultivos, pero sus poblaciones son mucho menos numerosas que las de las plagas lo que los beneficia ya que son los mas afectados cuando se aplican insecticidas. Actualmente existen en el Perú alrededor de 120 laboratorios dedicados a la producción de biocontroladores de distintas especies, los cuales son libertados en los cultivos utilizando métodos de facil manipulación para los agricultores

Por mucho tiempo se usaron los insecticidas pero nunca fueron tan eficientes como esta nueva practica biológica de plagas.


VENTAJAS Y DESVENTAJAS DEL CONTROL BIOLOGICO DE PLAGAS
El control biológico cuando funciona entrelas que se pueden destacar:
El control biológico con frecuencia a largo tiempo es permanente
Evita plagas secundarias
No existen problemas con intoxicaciones

La relación con el ambiente es muy favorable
Unas de sus desventajas son las siguientes:
Ignorancia sobre los principios del método

Falta de apoyo económico
Falta de personal especializado

Enemigos naturales mas susceptibles a los plaguicidas de las plagas
El beneficio del control biológico se puede valorar en términos de éxito, un éxito se obtiene cuando se utiliza el control biológico contra una plaga importante y sobre un area extensa a tal grado que las aplicaciones de insecticidas se vuelvan raras.



En la región Arequipa existen dos zonas principales de producción de olivos y presentan 4 plagas que son: margaronia, mosca blanca, olivícola y serrulata

Estas plagas tienen como característica alimentarse a través de la succión de la savia de las hojas de olivo y como consecuencia de la alimentación, excretan una mielecilla que se fusiona con el polvo de las hojas y con un hongo llamado fumagina que se encuentra en el ambiente.

Para cada una de las plagas hay que usar cierto preventivo o ciertos pasos para poderla extinguir ya que cada una es diferente se pueden poner hongos organicos, realizar podas de luminosidad, realizar lavados con presión, utilizar trampas o paneles de plastico amarillo.

Enseguida se presentan los diferentes tipos de leucocitos:
• NEUTROFILOS.
Cuando la cifra de neutrófilos absolutos es de 1.5 X 109/L, se habla de neutropenia; cuando la cantidad es mayor a 7.0 X 109/L, se habla de neurofilia. (5
• EOSINÓFILOS.
Existen varias causas de eosinofilia (enfermedades alérgicas, infestaciones por parasitos, enfermedades infecciosas, padecimientos cutáneos, enfermedades gastrointestinales, enfermedades hematológicas.) se describe que los pacientes con síndrome de Cushingtienen eosinopenia, pero, si se acepta que es normal que en una cuenta diferencial no haya eosinófilos.
• BASÓFILOS.
Las causas de basofilia son leucemia mieloide crónica, polisitemia vera, metaplasia mieloide, enfermedad de Hodgkin, anemía hemolítica crónica , sinusitis crónica, varicela, mixedema, síndrome nefrotico, el posoperatorio a esplenectomía, etc.
• LINFOCITOS.
Las causas de linfocitosis son varias casi todas infecciosas. (6
• MONOCITOS.
Cuando la cuenta absoluta de monocitos excede de 500/uL (0.5 X 109/L) se habla de monocitosis cuyas causas son : leucemias, tuberculosis metaplacia mieloide acnogénica, polisitemia vera, enfermedad de Hodking linfomas malignos, teusarismosis, recuperación de daño medular por radiaciones o por medicamentos, paludismo, kala-azar, tripanosomiasis, rickettsiasis, endocarditis infecciosa, brucelosis, colitis ulcerosa, enteritis regional, sarcoidosis, padecimientos autoinmunitarios, etc. (7)
MATERIAL:
Jeringa y aguja
Ligadura
Algodón con alcohol
Portaobjetos
Puente de coloración
Colorante de Wright
Buffer de fosfatos pH 6.4
Aceite de inmersión
Microscopio

METODO:
1.- Seleccionar un portaobjetos nuevo de 25 x 75 mm para hacer extendidos, que tenga la orilla relativamente lisa.
2.- Colocar una pequeña gota de sangre en la orilla de un portaobjetos limpio y seco. Colocar el portaobjetos para hacer un extendido en un ángulo de 30 a 45 grados con respecto al portaobjetos que tiene la muestra y hacer contacto con la gota. Esta debe extenderse rápidamente a lo largo de la orilla del portaobjetos para hacer los extendidos. Deslizar elportaobjetos de extensión sobre la superficie dispersando la muestra de sangre. El portaobjetos de extensión no se despegará hasta haber extendido toda la sangre. El grueso del extendido de sangre puede regularse modificando el ángulo del portaobjetos extensión, variando el tamaño de la gota de sangre, la presión o la velocidad de extensión.
3.- El extendido de sangre se seca al aire. Una vez seco, se escribe con lápiz el nombre del paciente en una orilla del portaobjetos.
4.- Cubrir el portaobjetos completamente con el colorante de Wright, dejándolo 5 minutos (el tiempo varia en cada lote de colorante).
5.-añadir el amortiguador y, sin tirar el colorante, soplar ligeramente para mezclar uniformemente. Dejar 7 minutos (aparecerá un brillo metálico verde), (el tiempo varía en cada lote de colorante).
6.- Enjuagar cuidadosamente con agua de la llave ó amortiguador de fosfatos, para eliminar todo el exceso de colorante.
7.- Dejar secar al aire en posición inclinada.
8.- Limpiar con un algodón con alcohol la parte posterior del portaobjetos para quitar el exceso de colorante.
9.- Observar en el microscopio con objetivo de inmersión e identificar cuando menor 100 Leucocitos y reportar estos valores en porcentaje.
NOTA!: durante la realización de esta practica existió controversia en base a los tiempos de tinción por lo que se decidió que cada mesa ocuparía uno distinto, a la mesa 1 le correspondió 6 minutos con colorante de Wright y 3 minutos con sol. Buffer.

RESULTADOS
Los resultados esperados en la tinción serán los siguientes:
 Hematíes en color rosa
 Núcleos de los Leucocitos de azulpurpura, con la cromatina y netamente diferenciadas.
¶ Gránulos neutrófilos del citoplasma, lila ó violeta.
¶ Gránulos eosinófilos, rojo tirando a naranja
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