LABORATORIO LIMNOLOGIA
PERIFITON
INTRODUCCION
El perifiton es una comunidad compleja de microbiota (algas, bacterias, hongos,
insectos y detritus organico e inorganico) que esta
adherida a un sustrato, el que puede ser organico e inorganico,
vivo o muerto (piedras, rocas, troncos y demas objetos sumergidos). La
mayoría de los organismos del perifiton presentan diversas
adaptaciones para la fijación (Roldan 1992, Bouchard &
Anderson 2001).
Los organismos fotosintéticos que habitualmente son
los primeros colonizadores, generalmente son reemplazados en el tiempo por
organismos heterotróficos de primer orden, los cuales gradualmente
desplazan a las especies pioneras. A medida que los componentes
fotosintéticos del sistema cambian, la vida
animal que los acompaña también lo hace. En
algunos casos, las especies que llegan primero facilitan o inhiben la
colonización de las especies que llegan después; en otros casos,
los factores fisicoquímicos y
las interacciones biológicas son la influencia principal que determinan
las etapas de la sucesión en la comunidad (Connell&Slatyer 1977,
Mook 1981, Field 1982, Biggs 1987, Oshurkov 1992). Existe
evidencia que indica que las comunidades, al igual que las poblaciones de las
cuales estan compuestas, son dinamicas, y cambian continuamente a
medida que las condiciones ambientales cambian (Margalef 1983, 1998, Cole 1988,
Dudgeon & Chan 1992, Roldan 1992, Lane et al. 2003). La
comunidadperifítica presenta variaciones en su composición, biomasa
y productividad anual con fluctuaciones espaciales y temporales. En muchos
sistemas acuaticos, el perifiton es la base de la cadena trófica
y sus componentes, actúan como reductores y transformadores
de nutrientes (Aloi 1990, Rodrigues et al. 2000).
El mejor método para el estudio de la colonización y
sucesión del
perifiton, es el uso de sustratos artificiales. Son ideales
para estudiar ritmos de colonización, interacciones entre poblaciones,
impacto por contaminantes, y para comparar distintos ambientes entre sí
(St-cyr et al. 1997, Barbour et al. 1999, Lin&Shao 2002). Los
sustratos artificiales (vidrio, plastico, acetato, ceramica y madera,
entre otros) permiten realizar estimaciones cuantitativas con relativa
precisión, son de facil manipulación y son indicados para
analizar estrategias adaptativas de los organismos al habito perifítico
(Austin et al. 1981, Slack et al. 1982, Slack et al. 1988, Aloi 1990,
Roldan 1992).
Mediante el perifiton se puede determinar el estado de eutroficación de un cuerpo de agua (Biggs 1989, Roldan et al. 2001,
Dodds 2006). Ademas de la alta diversidad, los
organismos perifíticos poseen tiempos de generación corto y
ciclos de vida relativamente simples, lo que permite usarlos con bastante
eficacia para desarrollar y probar modelos ecológicos (Rodrigues et al.
2000, Smith & Smith 2001).
En Colombia
se han realizado pocos trabajos enzooperifiton. En
algunos estudios se analiza la microfauna asociada al (fito)perifiton
(Roldan et al. 2001). La mayor parte de los estudios se han enfocado en las algas y mediciones de productividad
primaria (Gonzalez & Donato 1991, Roldan et al. 2001). En el
departamento del Tolima se registran los trabajos de Villa et al. (1998) en el
río Combeima y Gualtero &Trilleras (2001) en el embalse de Prado. En
el río Combeima se han realizado estudios sobre
macroinvertebrados como los de Reinoso (1999) y
recientemente se incluyeron algunas estaciones de muestreo como
parte del estudio de los tricópteros del río Coello
(Guevara et al. 2005).
Con el presente trabajo se pretende determinar la dinamica espacial y
temporal observar e identificar procesos de colonización y el tipo
organismos presentes en esta sucesión de perifiton, comparado con lo
observado en la clase anterior,determinar la estructura del perifiton colectado
en en la charca de el jardín botanico de la universidad del
Tolima determinar la dinamica del perifiton presente en la charca de el
jardín botanico de la universidad del Tolima determinar la
productividad primaria y la biomasa en la charca de el jardín
botanico de la universidad del Tolima
MATERIALES Y MÉTODOS
Area de estudio
Las muestras fueron tomadas en una charca dentro del jardín
botanico de la universidad del Tolima
Trabajo en campo
El estudio se realizó entre el 16 de octubre de 2010 y el 2de noviembre
de 2010. Se tomaron muestras biológicas y de algunos factores
físicos y químicos (nubosidad, pH, Temperatura), la visibilidad del
disco Secchi y la velocidad de la corriente, durante 10 semanas para cada una
de las zonas de muestreo. Para el estudio de la comunidad zooperifítica se colocaron en
cada zona, tres muestreadores de los cuales dos fueron diseñados en
aluminio (Fig. 1a), cada uno con seis placas portaobjetos (i.e. sustratos
artificiales de colonización) ancladas y, el otro con ocho placas (Fig.
1b). Este último presenta una base rectangular en concreto que
actúa a modo de lastre, lleva adherido un marco
metalico rígido con una abertura en la parte superior e inferior,
que permite el anclaje de las placas portaobjetos (Fig. 1b). Ambos
muestreadores, se colocaron en lugares estratégicos, evitando posibles
daños o pérdida por efecto de la corriente, según las
recomendaciones de Villa et al. (1998). Se realizó una
extracción quincenal de una de las placas portaobjetos de cada
muestreador durante diez semanas.
BIBLIOGRAFÍA
* Roldan G. 1992. Fundamentos de
Limnología Neotropical. Medellín (Colombia):
Universidad de Antioquia. 529 pp.
* Roldan G, Posada JA, Gutiérrez JC. 2001. Estudio
Limnológico de los recursos hídricos del parque de
Piedras Blancas. Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y
Naturales: Colección Jorge Alvarez Lleras, No. 18. Bogota:
Editora Guadalupe. pp. 23, 55-61.
* ConnellJH, Slatyer RO. 1977. Mechanisms of succession in
natural communities and their role in community stability and organization.
American Naturalist 111:1119-1144.
* Guevara-Cardona, G., Reinoso-Flórez, G., Villa Navarro, F. (2006).
Comunidad de invertebrados del
perifiton del río Combeima (Tolima, Colombia).
Revista Tumbaga, 1, 43-54
* Mook DH. 1981. Effects of disturbance and initial settlement on
fouling community structure. Ecology 62:522-526.
* Field B. 1982. Structural analysis of fouling community
development in the Damariscotta River estuary, Maine.
Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 57:25-33.
* Biggs BJF. 1987. Effects of sample storage and mechanical blending on the
quantitative analysis of river periphyton. Freshwater Biology 18:197-218.
* Biggs BJF. 1989. Biomonitoring of organic pollution using periphyton, South
Branch, Canterbury,
* Oshurkov VV. 1992. Succession and climax in some fouling communities.
Biofouling 6:1-12. Protasov AA, Silayeva AA, Yefanova VV. 2004. Assessment of the Fouling of Some Anticorrosive Coverings in
FreshWaters. Hydrobiological Journal 40:26-35.
* Margalef R. 1983. Limnología. Barcelona: Omega. 1118 pp.
* Margalef R. 1998. Ecología. Barcelona: Omega. 1256 pp.
* Villa F, Losada S, Quintana M. 1998. Estudio del perifiton del río
Combeima. Ibagué, Trabajo de Investigación. Universidad del Tolima, Facultad de Ciencias. Departamento
de biología.