EVALUACIÓN DE LA CALIDAD ATMOSFÉRICA DE
LA CIUDAD DE GRANADA POR EL MÉTODO DEL IPA
Índice de contenido
INTRODUCCIÓN 3
MATERIAL Y MÉTODOS 4
ZONA DE ESTUDIO 4
METODOLOGÍA 6
LISTADO ALFABÉTICO DE ESPECIES 6
RESULTADOS Y DISCUSIÓN 8
TABLAS DE FRECUENCIA Y COBERTURAS 8
TABLAS DE DATOS Y CALCULOS 8
RELACIÓN DE ESPECIES Y SU CORTEJO MEDIO ESPECÍFICO (Q) 13
MAPA DE ISOCONTAMINACIÓN 14
CONCLUSIONES 16
BIBLIOGRAFÍA 17
INTRODUCCIÓN
La contaminación atmosférica es la presencia de gases y/o
partículas de composición o en concentración
anómalas a las naturales. En las ciudades este
tipo de contaminación esta a la orden del día ya que las actividades
propias de ellas son generadoras de emisiones a la atmósfera:
industrias, transporte, calefacciones, etc.
La presencia de estos contaminantes tienen repercusiones negativas sobre la
calidad del
aire, sobre el entorno y, muy importante, sobre la salud de los ciudadanos.
Muchos de los contaminantes emitidos son GEIs (Gases de Efecto Invernadero),
pero mas importante aún a nivel local, es que favorecen la
generación del smog fotoquímico que conlleva la formación
de las denominadas “islas”, una cúpula de
contaminación sobre la misma ciudad, de caracter muy estable y
por tanto muy difícil de romper. Dentro de esta cúpula la
concentración de contaminantes es mas elevada que en afuera de ella y ademas generan reacciones secundarias con
formación de contaminantes atmosféricos secundarios, algunos de
ellos peligrosos y tóxicos para la salud humana. Otro de los efectos de
esta cúpula es su climatología, ya que al ser una cúpula
atmosférica de caracter estable la temperatura dentro de ella es superior en unas décimas, e incluso grados,
por encima de su alrededor, lo que a nivel local supone un cambio importante.
Es por ello el interés despertado sobre los
métodos de cuantificación de la calidad y sobre la
disminución de la emisión de contaminantes atmosféricos.
La cuantificación puede realizar de manera física yquímica,
pero también existen otro tipo de indicadores de esta calidad, como son
los líquenes epífitos, los cuales tienen una gran capacidad cmo
bioindicadores ya que presentan menor influencia del sustrato y son los
organismos mas sensibles frente a los efectos nocivos de la
contaminación atmosférica, actuando como monitores continuos e
integradores de las condiciones ambientales y de sus cambios (Fernéndez-
Salegui et al., 2006).
La información obtenida con el estudio de los líquenes se
cuantifica a través del Índice de Pureza
Atmosférica (I.P.A.) que ofrece un valor numérico del nivel de contaminación atmosférica en
función del
número de especies y de su frecuencia en el area muestreada.
Ademas, según Liebendorfer et al., (1988), esta
estadísticamente comprobado, con una correlación del 98% entre
los datos de inmisión de varios contaminantes y la suma de las
frecuencias de las especies presentes en los inventarios, que los
líquenes son sensibles al efecto sinérgico de varios contaminantes
presentes en la atmósfera en el mismo momento.
MATERIAL Y MÉTODOS
ZONA DE ESTUDIO
El territorio objeto de estudio se centra en la ciudad de Granada, en la cual
la mayor parte de las emisiones a la atmósfera proviene del transporte y
de las calefacciones y calderas domésticas, apenas existe la
emisión industrial. La ciudad se encuentra a una altitud de
aproximadamente 738m y localizada en la depresión penibética de Sierra Nevada y el río Geníl.
Los niveles de contaminación atmosférica en esta ciudad son
bastante elevados, siendo muchas veces objeto de prensa ya que se han llegado a superar en varias ocasiones los límites
legales de contaminación atmosférica.
Con los informes diarios de calidad del
aire de la Consejería de Medio Ambiente de la Junta de Andalucía
se elaboran distintas graficas que representan la calidad del aire. Para el caso,
se muestran aquí las graficas del año 2009 que indican en
número de días al mes en el que se registra un determinado estado
de calidaddel aire en las distintas estaciones de muestreo de Granada.
[pic]
La zona Norte:
A continuación se detalla un mapa sobre la zona de estudio y los puntos
de muestreo empleados:
2 METODOLOGÍA
Para la realización del muestreo por el método del IPA se ha
seguido la siguiente metodología e instrucciones:
1. Los inventarios se deben efectuar sobre el mayor número de
forófitos de forma que exista una amplia representación en el
area de estudio.
2. La unidad de muestreo para el estudio de la flora liquénica es la
estación de muestreo, formada por un grupo de
arboles de la misma especie lo mas cercanos posible unos de
otros.
3. En cada estación se deben realizar un
maximo de 5 inventarios, cada uno de ellos en un forófito
diferente. Un número mayor de forófitos
por cada estación haría redundante la información puesto
que el número de especies de líquenes se estabiliza
practicamente a partir de 5 forófitos, siempre y cuando se
mantengan unas constantes ecológicas y ambientales.
4. En todas las estaciones se muestrean arboles adultos, sanos,
aproximadamente con el mismo diametro de tronco principal.
5. Hay que excluir arboles cuyo tronco presentan alguna
inclinación, lo cual, propicia unas condiciones ecológicas
distintas para los líquenes.
6. Siempre que se pueda, la altura del
muestreo sobre cada tronco debe estar comprendida entre 110 y 170 cm., con el fin de evitar la influencia del suelo y el medio habitualmente diferente
que significan las ramas.
7. En cada forófito se registran:
A- Las especies de líquenes epífitos que aparecen,
B- Si estan presentes en grietas, superficie de la corteza o asentadas
sobre otro
sustrato (capa muscinal, polvo),
C- Fertilidad (estéril o fértil), en base a la presencia o
ausencia de estructuras reproductoras (apotecios, peritecios)
D- Estimación de la frecuencia y cobertura de cada especie
liquénica (escala
fitosociológica subjetiva de 1 a 5)
8. En cadaforófito, se recogen muestras de corteza
conteniendo los líquenes censados para confirmar en el laboratorio la
especie y realizar, en su caso, posteriores analisis químicos.
3 LISTADO ALFABÉTICO DE ESPECIES
Buellia alboatra
Caloplaca cerina
Caloplaca decipiens
Candelaria concolor
Candelariella subdeflecta
Candelariella xanthostigma
Lecanora chlarotera
Lecanora hagenii
Lecidella elaeochroma
Parmelia sp.
Phaeophyscia orbicularis
Physcia adscendens
Physcia clementei
Physcia stellaris
Physcia tenella
Physconia grisea
Pleurococcus sp.
Rinodina pyrina
Xanthoria parietina
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
TABLAS DE FRECUENCIA Y COBERTURAS
Son las tablas aportadas por el profesor, donde se ha obtenido una
identificación y recuento de las especies del punto muestreado siguiendo
la metodología ya explicada anteriormente. Sirven como base para los
calculos de los apartados siguientes.
1 TABLAS DE DATOS Y CALCULOS
Las siguientes tablas muestran los calculos realizados sobre la
frecuencia de las especies de líquenes que se ha observado en cada punto
de muestreo, para al final obtener el IPA de dicho punto.
|1 Plaza Nueva |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,2 |1 |0,2 |0,2 |5,11 | |1,02 |
|Lecanora chlarotera |0,2 |2 |0,4 |0,3 |5,88 | |1,76 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,6 |4 |0,8 |0,7 |4,92 | |3,45 |
|Physcia tenella |0,2 |1 |0,2 |0,2 |6,13 | |1,23 |
|Pleurococcus sp. |0,8 |5 |1 |0,9 |5,07 | |4,57 |
| | | | | | |IPA|1,20 |
|2 Plaza de la Universidad |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,33 |2 |0,33 |0,33 |5,1 | |1,70 |
|Lecanora chlarotera |0,17 |1 |0,17 |0,17 |5,9 | |0,98 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,50 |3 |0,50 |0,50 |4,9 | |2,46 |
|Physcia tenella |0,50 |3 |0,50 |0,50 |6,1 | |3,07 |
|Physconia grisea |0,17 |1 |0,17 |0,17 |6,5 | |1,08 |
|Pleurococcus sp. |1,00 |6 |1,00 |1,00 |5,1 | |5,07 |
| | | | | | |IPA |1,44 |
|4 Plaza de Santo Domingo |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Caloplaca cerina |0,4 |2 |0,4 |0,4 |7,89 | |3,16 |
|Candelaria concolora. |0,4 |2 |0,4 |0,4 |8 | |3,20 |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |5 |1 |1 |4,9 | |4,92 |
|Physcia stellaris |0,4 |2 |0,4 |0,4 |7,56 | |3,02 |
|Physconia grisea |0,6 |3 |0,6 |0,6 |6,5 | |3,90 |
|Pleurococcus sp. |0,6 |3 |0,6 |0,6 |5,1 | |3,04 |
|Xanthoria parietina |0,6 |3 |0,6 |0,6 |6,93 | |4,16 |
| | | | | | |IPA |2,54 |
5 Calle Gran Capitan |P |Rt |Rm |F|Q | |Q*F |
Phaeophyscia orbicularis |0,44 |4 |0,44 |0,44 |4,92 | |2,19 |
Physconia grisea |0,33 |4 |0,44 |0,39 |6,50 | |2,53 |
Pleurococcus sp. |1,00 |10 |1,11 |1,06 |5,11 | |5,35 |
| | | | | |IPA |1,01 |
|
|7 Campo del Príncipe |P |Rt |Rm |F |Q | | Q*F |
|Caloplaca cerina |0,4 |2 |0,4 |0,4 |7,9 | |3,16 |
|Candelaria concolor |0,2 |1 |0,2 |0,2 |8 | |1,60 |
|Phaeophyscia orbicularis. |0,8 |4 |0,8 |0,8 |4,9 | |3,94 |
|Physcia stellaris |0,4 |2 |0,4 |0,4 |7,6 | |3,02 |
|Physcia tenella |0,2 |1 |0,2 |0,2 |6,1 | |1,23 |
|Physconia grisea |0,4 |2 |0,4 |0,4 |6,5 | |2,60 |
|Pleurococcus sp. |0,4 |3 |0,6 |0,5 |5,1 | |2,54 |
|Xanthoria parietina |0,4 |2 |0,4 |0,4 |6,9 | |2,77 |
| | | | | | |IPA |2,08 |
|8 Plaza de Gracia |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Buellia alboatra |0,11 |1 |0,11 |0,11 |7 | |0,78|
|Caloplaca cerina |0,22 |2 |0,22 |0,22 |7,89 | |1,75 |
|Candelariella xanthostigma |0,11 |1 |0,11 |0,11 |5,11 | |0,57 |
|Lecanora chlarotera |0,22 |2 |0,22 |0,22 |5,88 | |1,31 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,67 |6 |0,67 |0,67 |4,92 | |3,28 |
|Physcia stellaris |0,11 |1 |0,11 |0,11 |7,56 | |0,84 |
|Pleurococcus sp. |0,67 |6 |0,67 |0,67 |5,07 | |3,38 |
|Xanthoria parietina |0,33 |3 |0,33 |0,33 |5,93 | |1,98 |
| | | | | | |IPA |1,39 |
|9 Melchor Almagro |P |Rt |Rm |F |Q Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,07 |1 |0,07 |0,07 |5,1 0,34 |
|Lecanora chlarotera |0,27 |4 |0,27 |0,27 |5,88 1,57 |
|Phaeophyscia orbicularis. |0,33 |5 |0,33 |0,33 |4,9 1,64 |
|Pleurococcus sp. |0,93 |14 |0,93 |0,93 |5,1 4,73 |
| | | | |IPA |0,83 |
|10 San Nicolas |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,83 |9 |1,5 |1,17 |5,11 | |5,96 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,50 |5 |0,83 |0,67 |4,92 | |3,28|
|Physcia adscendens |0,17 |1 |0,17 |0,17 |8,67 | |1,44 |
|Physcia tenella |0,17 |3 |0,5 |0,33 |6,13 | |2,04 |
|Physconia grisea |0,33 |3 |0,5 |0,42 |6,5 | |2,71 |
|Pleurococcus sp. |1,00 |12 |2 |1,50 |5,07 | |7,61 |
|Xanthoria parietina |0,17 |1 |0,17 |0,17 |6,93 | |1,16 |
| | | | | | |IPA |2,42 |
|11 Calle Mulhacen |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,5 |4 |0,5 |0,5 |5,1 | |2,56 |
|Lecanora chlarotera |0,13 |1 |0,13 |0,13 |5,9 | |0,74 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,5 |5 |0,63 |0,56 |4,9 | |2,77 |
|Pleurococcus sp. |0,88 |8 |1 |0,94 |5,1 | |4,75 |
| | | | | | |IPA |1,08 |
|12 Antequeruela Alta, Paseo de los Martires|P |Rt |Rm |F |Q |
|Q*F |
|Caloplaca cerina |0,44 |8 |0,89 |0,67 |7,89 | |5,26 |
|Candelaria concolor |0,78 |24 |2,67 |1,72 |8 | |13,78 |
|Lecanora chlarotera |0,44 |15 |1,67 |1,06 |5,88 | |6,21 |
|Lecanora hagenii |0,11 |1 |0,11 |0,11 |6,4 | |0,71 |
|Lecidella elaeochroma |0,11 |2 |0,22 |0,17|9,33 | |1,56 |
|Physcia stellaris |0,78 |25 |2,78 |1,78 |7,56 | |13,44 |
|Physcia tenella |0,78 |25 |2,78 |1,78 |6,13 | |10,90 |
|Pleurococcus sp. |0,11 |2 |0,22 |0,17 |5,07 | |0,85 |
|Rinodina pyrina |0,33 |10 |1,11 |0,72 |9 | |6,50 |
|Xanthoria parietina |0,89 |19 |2,11 |1,50 |6,93 | |10,40 |
| | | | | | |IPA |6,96 |
|13 Biblioteca |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Caloplaca cerina |1,00 |5 |1 |1 |7,9 | |7,89 |
|Candelaria concolor |0,80 |4 |0,8 |0,8 |8 | |6,40 |
|Lecanora chlarotera |1,00 |5 |1 |1 |5,9 | |5,88 |
|Lecanora hagenii |0,20 |1 |0,2 |0,2 |6,4 | |1,28 |
|Lecidella elaeochroma |0,20 |1 |0,2 |0,2 |9,3 | |1,87 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,80 |4 |0,8 |0,8 |4,9 | |3,94 |
|Physcia stellaris |0,80 |4 |0,8 |0,8 |7,6 | |6,05 |
|Pleurococcus sp. |0,20 |3 |0,6 |0,4 |5,1 | |2,03 |
|Rinodina pyrina |0,20 |1 |0,2 |0,2 |9 | |1,80 |
|Xanthoria parietina |0,80 |4 |0,8 |0,8 |6,9 | |5,54 |
| | | | | | |IPA |4,27 |
|14 Cuesta del Chapiz |P |Rt |Rm |F | Q Q*F |
|Caloplaca cerina |0,08 |1 |0,08 |0,08 |7,89 0,66 |
|Candelaria concolor |0,08 |1 |0,08 |0,08 |8 0,67 |
|Candelariella subdeflecta |0,08 |1 |0,08 |0,08 |10 0,83 |
|Candelariella xanthostigma |0,50 |8 |0,67 |0,58 |5,11 2,98 |
|Lecanora chlarotera |0,08 |2 |0,17 |0,13 |5,88 0,74 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,83 |22 |1,83 |1,33 |4,92 6,56 |
|Physcia stellaris |0,08 |2 |0,17 |0,13 |7,56 0,95 |
|Physcia tenella |0,08 |2 |0,17 |0,13 |6,13 0,77 |
|Physconia grisea |0,58 |12 |1,00 |0,79 |6,5 5,15 |
|Pleurococcus sp. |0,92 |21 |1,75 |1,33 |5,07 6,76 |
|Xanthoria parietina |0,42 |6 |0,50 |0,46 |6,93 3,18 |
| | | | | IPA |2,92 |
|15 Av. de Madrid |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |1 |1 |1 |1 |5,11 | |5,11 |
|Lecanora chlarotera |1 |1 |1 |1 |5,88 | |5,88 |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |1 |1 |1 |4,92 | |4,92 |
|Pleurococcus sp. |1 |1 |1 |1|5,07 | |5,07 |
| | | | | | |IPA |2,1 |
|16 Calle Real de Cartuja |P |Rt |Rm |F | Q Q*F |
|Caloplaca decipiens |0,07 |1 |0,07 |0,07 |5 0,36 |
|Candelariella xanthostigma |0,14 |2 |0,14 |0,14 |5,11 0,73 |
|Lecanora chlarotera |0,14 |2 |0,14 |0,14 |5,88 0,84 |
|Lecanora hagenii |0,07 |1 |0,07 |0,07 |6,4 0,46 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,64 |9 |0,64 |0,64 |4,92 3,16 |
|Pleurococcus sp. |0,93 |14 |1,00 |0,96 |5,07 4,89 |
| | | | |IPA |1,04 |
|17 Carmen de los Martires |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelaria concolor |0,8 |9 |1,8 |1,3 |8 | |10,40 |
|Lecanora chlarotera |0,2 |3 |0,6 |0,4 |5,88 | |2,35 |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |10 |2 |1,5 |5,92 | |8,88 |
|Physcia stellaris |0,8 |11 |2,2 |1,5 |7,56 | |11,34 |
|Physconia grisea |0,8 |10 |2 |1,4 |6,5 | |9,10 |
|Pleurococcus sp. |0,2 |3 |0,6 |0,4 |5,07 | |2,03 |
|Xanthoria parietina |0,8 |9 |1,8 |1,3 |6,93 | |9,01 |
| | | | | | |IPA |5,31 |
|18 Calle Manuel Angeles Ortiz |P |Rt |Rm |Q |F | |Q*F |
|Candelaria concolor |0,4 |2 |0,4 |8 |0,4 | |3,20 |
|Candelariella xanthostigma |0,2 |1 |0,2 |5,11 |0,2 | |1,02 |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |6 |1,2 |4,92 |1,1 | |5,41 |
|Pleurococcus sp. |0,8 |5 |1 |5,07 |0,9 | |4,56 |
|Xanthoria parietina |0,6 |3 |0,6 |6,93 |0,6 | |4,16 |
| | | | | | |IPA |1,84 |
|19 Plaza de la Concordia |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |5 |1 |1 |4,92 | |4,92 |
|Physcia stellaris |0,2 |1 |0,2 |0,2 |7,56 | |1,51 |
|Physcia tenella |0,2 |1 |0,2 |0,2 |6,13 | |1,23 |
|Pleurococcus sp. |1 |5 |1 |1 |5,07 | |5,07 |
|Xanthoria parietina |1 |5 |1 |1 |6,93 | |6,93 |
| | | | | | |IPA |1,97 |
|20 Avenida de Dilar |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma. |0,2 |1 |0,2 |0,2 |5,11 | |1,02 |
|Lecanora chlarotera |0,6|3 |0,6 |0,6 |5,88 | |3,53 |
|Lecanora hagenii |0,2 |1 |0,2 |0,2 |6,4 | |1,28 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,8 |6 |1,2 |1 |4,92 | |4,92 |
|Pleurococcus sp. |0,8 |7 |1,4 |1,1 |5,07 | |5,58 |
|Xanthoria parietina |0,2 |1 |0,2 |0,2 |6,93 | |1,39 |
| | | | | | |IPA |1,77 |
|21 Calle Pablo Picasso |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,43 |3 |0,43 |0,43 |5,11 | |2,19 |
|Lecanora chlarotera |0,14 |1 |0,14 |0,14 |5,88 | |0,84 |
|Phaeophyscia orbicularis |1,00 |8 |1,14 |1,07 |4,92 | |5,27 |
|Pleurococcus sp. |0,86 |7 |1,00 |0,93 |5,07 | |4,71 |
|Xanthoria parietina |0,29 |2 |0,29 |0,29 |6,93 | |1,98 |
| | | | | | |IPA |1,50 |
|22 Camino de la Zubia |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,40 |5 |0,5 |0,45 |5,11 | |2,30 |
|Lecanora chlarotera |0,10 |2 |0,2 |0,15 |5,88 | |0,88 |
|Lecanora hagenii |0,20 |4 |0,4 |0,3 |6,4 | |1,92 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,70 |8 |0,8 |0,75 |4,92| |3,69 |
|Pleurococcus sp. |1,00 |14 |1,4 |1,2 |5,07 | |6,08 |
| | | | | | |IPA |1,49 |
|23 Avenida del Sur |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |1 |1 |1 |1 |5,1 | |5,11 |
|Phaeophyscia orbicularis |1 |1 |1 |1 |4,9 | |4,92 |
|Pleurococcus sp. |1 |1 |1 |1 |5,1 | |5,07 |
| | | | | | |IPA |1,51 |
|27 Cerrillo de Maracena |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Caloplaca cerina |0,40 |2 |0,4 |0,4 |7,89 | |3,16 |
|Candelaria concolor |0,60 |5 |1 |0,8 |8 | |6,40 |
|Candelariella xanthostigma |0,20 |1 |0,2 |0,2 |5,11 | |1,02 |
|Lecanora chlarotera |0,40 |2 |0,4 |0,4 |5,88 | |2,35 |
|Lecidella elaeochroma |0,20 |1 |0,2 |0,2 |9,33 | |1,87 |
|Phaeophyscia orbicularis |1,00 |9 |1,8 |1,4 |5,92 | |8,29 |
|Physcia adscendens |0,20 |1 |0,2 |0,2 |8,67 | |1,73 |
|Physcia clementei |0,20 |1 |0,2 |0,2 |10 | |2,00 |
|Physconia grisea |0,60 |5 |1 |0,8 |6,5 | |5,20 ||Pleurococcus sp. |0,40
|4 |0,8 |0,6 |5,07 | |3,04 |
|Xanthoria parietina |1,00 |8 |1,6 |1,3 |6,93 | |9,01 |
| | | | | | |IPA |4,41 |
2 RELACIÓN DE ESPECIES Y SU CORTEJO MEDIO ESPECÍFICO (Q)
El cortejo medio específico es la media del número de especies
que acompañan a la especie en cuestión. Es
mayor cuanto menor sea la contaminación de la zona, lo cual es
lógico ya que a menor contaminación mayor sera la
diversidad y abundancia en líquenes. Ademas, esta
cuantificación nos indica que aquellos que tengan el valor de Q
mas altos son aquellos que se encuentran en las
zonas de mayor pureza ambiental, y por tanto, que son mas sensibles a la
contaminación y su frecuencia y cobertura disminuyen con ella.
Se detalla a continuación la tabla de valores de Q desde los valores
maximos a los mínimos:
|Nombre Especies |Q |
|Candelariella subdeflecta |10 |
|Parmelia sp. |10 |
|Physcia clementei |10 |
|Lecidella elaeochroma |9,33 |
|Rinodina pyrina |9 |
|Physcia adscendens |8,67 |
|Candelaria concolor |8 |
|Caloplaca cerina |7,89 |
|Physcia stellaris |7,56 |
|Buellia alboatra |7 |
|Xanthoria parietina |6,93 |
|Lecanora hagenii |6,4 |
|Physconia grisea|6,15 |
|Physcia tenella |6,13 |
|Lecanora chlarotera |5,88 |
|Candelariella xanthostigma |5,11 |
|Pleurococcus sp. |5,07 |
|Caloplaca decipiens |5 |
|Phaeophyscia orbicularis |4,92 |
Tabla 5: Valores del cortejo medio específico de cada especie.
3 MAPA DE ISOCONTAMINACIÓN
Los resultados obtenidos se mapifican a continuación sobre el plano de la ciudad de Granada. Esto se realiza
a partir de la localización de cada punto con su IPA, y tras esto,
mediante la realización de interpolaciones se han obtenido las
areas de distribución por intervalos del IPA de cada zona,
denominadas así como zonas de isocontaminación, y todas esas
zonas juntas representadas en el mapa como mapa de isocontaminación.
Zonas con IPA entre 8,5 y 5,5: estas son las menos contaminadas, aquellas cuya
pureza atmosférica es la mas alta, y corresponden a la zona
mas elevada de Granada y con menor influencia del trafico rodado
como es la zona de la Alhambra, el Cementerio y alrededores (como es parte del
barrio del Realejo). También saliendo de Granada, hacia el noroeste se
vislumbra también una zona con disminución de la
contaminación y un aumento en la calidad, aunque se ha de tener en
cuenta que dicha zona se ha hallado por interpolación y no se ha
realizado ningún muestreo que verifique dichos resultados y considerando
que una zona con bastante trafico habra de tratarla con
precaución.
Zonas con IPA entre 0,5 y 2,5: estas son las mas contaminadas, cuya
calidad del aire es la peor y corresponde a las zonas mas
céntricas y la zona Sur y Oeste, con mayor afluencia del trafico
y mayor densidad poblacional, es decir, que también en esta zona existe
una mayor contaminación derivada de las calefacciones y calderas
domésticas.
Zonas conIPA intermedio, entre 2,5 y 5,5: estas zonas
son las intermedias entre unas y otras, presentan una calidad del
aire media a baja y su contaminación de significativa aunque no tanto como en la anterior zona.
Es la zona Este de Granada, circundante a la Alhambra, con trafico limitado por
horarios, con menor densidad poblacional y con una mayor existencia de zonas
arboladas. Esta zona también se extiende por la zona Norte y Noreste,
donde también se dan las mismas condiciones,
ademas de estar mas separadas de la zona céntrica
mas contaminada.
CONCLUSIONES
El presente estudio ha permitido delimitar 8 zonas de isocontaminación
en la ciudad de Granada.
Las zonas de menor diversidad liquénica corresponden a aquellas zonas
con mayor trafico rodado y con mayor densidad poblacional, esta es la
zona Centro, la zona Oeste por tener la circunvalación cerca y el Camino
de Ronda, ambas con gran afluencia de coches, y la Sur, con las mismas
condiciones. Las zonas de mayor diversidad liquénica ocurren son las
mas aisladas topograficamente del resto de la
ciudad, las mas elevadas, y así también alejadas de las
vías de dispersión de los contaminantes. También estas
zonas tienen menor afluencia del trafico por ser en su
mayoría limitado, y ademas son zonas de residencias mas
pequeñas, tipo casa o edificios pequeños.
Esto nos indica que la calidad del aire en una ciudad esta
estrechamente ligada con el trafico existente en ellas y esto a su vez
va ligado con el número de desplazamientos de sus habitantes en
vehículo particular. Esto constituye un
problema, pues son habitos y constumbres que la población tiene
muy arraigados y es muy difícil de cambiar. Para comenzar haría
falta una mejora en el sistema de transporte público de la ciudad, para
que la posterior concienciación a la población fuera fructuosa y
la motivara para llevar a cabo el uso responsable del automóvil.
También se observa que las zonas de mayor contaminación
corresponden a las zonas con mayor densidad de población, esdecir, con
concentración de edificios grandes con multitud de pisos y por tanto,
mayor número de personas viviendo ahí. Esto tiene dos
consecuencias, una, si hay mas población hay mas
trafico de esas personas que diariamente se desplazan por ella, y dos, al haber mayor número de
población mayor sera la emisiones domésticas derivadas, como por ejemplo ya se ha
dicho las calefacciones y calderas comunitarios.
Por último es también importante la situación
geografica y topografica, ya que influye también la
dirección del viento predominante, ya que alla donde se dirija
los contaminantes seran dispersados hacia esa zona, así como la
topografía, pues las zonas elevadas se ven menos influencias por la
contaminación de las areas colindantes y ademas la
dispersión de los contaminantes en ella se ve mas facilitada. Que
no se olvide que también un ambiente contiguo
adecuado favorece la disminución de la contaminación, como así se
observa en la cola que desde el Este de Granada se adentra hacia el Paseo del
Salón, zona mas céntrica, la cual tiene el río
contiguo y una zona arbolada abierta. Aunque la calidad no es del todo buena en
esa zona hay que considerar que respecto a la colindante si que implica un
cambio importante y que considerando que es una zona céntrica con mucho
trafico la variación es notable.
Así pues observamos que la calidad del aire en la ciudad de Granada es
por lo general baja o muy baja, con zonas de calidad media-baja en el Este y
Noreste, y sólo con calidad de media a alta existe una zona muy
localizada y de extensión reducida.
BIBLIOGRAFÍA
• Ayuntamiento de Granada, Area de Medioambiente, Calidad del Aire.
• Fernandez-Salegui, A. B.; Terrón, A.; y Barreno E.; 2006.
Bioindicadores de la calidad del aire en La Robla (León,
noroeste de España) diez años después. Lazaroa 27: 29-41
(2006)
• Liebendorfer, L., Herzig, R., Urech, M. & Ammann, K., 1998. Evaluation und Kalibrierung der Schweizer Flecten -
Indikationsmethode mit wichtigenLuftschadstoffen. Staub, Reinhaltung der
Luft 48: 233-238.
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|3 Calle Malaga |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Candelariella xanthostigma |0,4 |4 |0,4 |0,4 |5,1 | |2,04 |
|Lecanora chlarotera |0,2 |2 |0,2 |0,2 |5,9 | |1,18 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,5 |8 |0,8 |0,7 |4,9 | |3,20 |
|Physcia tenella |0,5 |5 |0,5 |0,5 |5,7 | |2,86 |
|Pleurococcus sp. |1 |13 |1,3 |1,2 |5,1 | |5,83 |
| | | | | | |IPA |1,51 |
|6 San Jerónimo |P |Rt |Rm |F |Q | |Q*F |
|Caloplaca cerina |0,36 |4 |0,36 |0,36 |7,89 | |2,87 |
|Candelariella xanthostigma |0,18 |2 |0,18 |0,18 |5,11 | |0,93 |
|Phaeophyscia orbicularis |0,45 |6 |0,55 |0,50 |4,92 | |2,46 |
|Pleurococcus sp. |0,91 |12 |1,09 |1,00 |5,07 | |5,07 |
| | | | | | |IPA |1,13 |
Ilustración 1: Plano de la Ciudad de Granada y localización
de los puntos de muestreo
Tabla 1: Grafica de la calidad del aire en la estación de la
Cartuja
Tabla 2: Grafica de la calidad del aire en la estación de la
zona Norte
Tabla 3: Grafica de la calidad del aire en la estación del
Palacio de Congresos
Tabla 4: Grafica de la calidad del aire en la estación del
Paseo Universitario.
