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Dialisis, extraccion, Electroforesis: sirve para el analisis de acidos nucleicos
Dialisis
Existen membranas (como
las celulares) que permiten el paso
de solutos, pero no de la fase dispersa de un coloide. Al ser
las partículas de estas mucho mayores, no pasan por los ¨poros¨
de la membrana. Gracias a esto no se
vacían nuestras células. Todos los coloides quedan en el interior
del citoplasma y solo
atraviesan las membranas de las partículas atómicas o moleculares
que tienen alguna función extracelular (como
la transmisión de información e pulsos eléctricos, por
ejemplo
Las membranas que impiden el paso
de los coloides se llaman membranas dializantes. El riñón
artificial es precisamente un aparato que suple al
riñón humano mediante una membrana de este tipo. Las sales de
desecho disueltas en la sangre, atraviesan las membranas, pero las
proteínas y otros coloides no
En el riñon artificial, la sangre se hace pasar por una membrana
semipermeable – que en sus primeras epocas consistia en papel celofan- la
cual suple la labor del riñon.Tal posibilidad fue planteada desde 1913
pero el primer aparato exitoso se proboen 1944. La construcción de un aparato comercial se realizo alrededor de 1960. Se
aplicaron conocimientos en mecanica de fluidos, la teoria del transporte
atraves de las membranas, la tranferencia de masa y la fisioquimica de
superficies.Luego de cinco años de trabajo se construyeron los primeros
prototipos, que usaban cartuchos de membranas desechables y diversos aparatos
de verificación y control.A mediados de los años setenta la
hemodialisis habia pasado a ser un procedimiento bien establecido en hospitales
para el tratamiento de pacientes con deficiencias agudas o cronicas.
Extraccion
Al igual que la filtración esta técnica esta basada en la
propiedad de solubilidad, pero ahora respecto a dos disolventes distintos.
Se espera que una de las sustancias presentes de la muestra sea mas
afín a uno de los disolventes, en cuyo caso pueda lograrse la
separación
Embudo de separación La mezcla liquida que contiene la sustancia por
separar y el disolvente (insoluble en el otro liquido) se agita vigorosamente.
Se espera que la sustanciamigre de la mezcla original al disolvente, con la que
se separara del
resto de los componentes no solubles con el disolvente
Electroforesis: sirve para el analisis de acidos nucleicos
Método para separar sustancias con cargas eléctricas que se
encuentran en una sustancia. Se coloca una muestra de la mezcla sobre el medio
de soporte (un trozo de papel de filtro o un gel), al
que se le aplica un campo eléctrico. Cada sustancia cargada migra hacia
el catodo o hacia el anodo a una velocidad que depende de su
carga neta y de su interacción de fricción con el medio.
Origen de las fibras de los pares craneales
Los pares craneales tienen un origen aparente que es
el lugar donde el mismo sale o entra en el encéfalo. El origen real es distinto de acuerdo a la función que
cumplan. Las fibras de los pares craneales con función motora (eferente)
se originan de grupos celulares que se encuentran en la profundidad del tallo encefalico
(núcleos motores) y son homólogas de las células del asta anterior de la
médula espinal. Las fibras de los pares craneales con función
sensitiva o sensorial (aferente) tienen sus células de origen (núcleos de primer orden) fuera del tallo
encefalico, porlo general en ganglios que son homólogos de los de
la raíz dorsal de los nervios raquídeos. Los
núcleos sensitivos de segundo orden se encuentran en el tallo
encefalico.
Clasificación funcional
Según su aspecto funcional, se agrupan así
• Los pares I, II y VIII estan dedicados a aferencias sensitivas
especiales.
• Los pares III, IV y VI controlan los movimientos oculares, los reflejos
fotomotores y la acomodación.
• Los pares XI y XII son nervios motores puros (XI para el
esternocleidomastoideo y el trapecio; y XII para los músculos de la
lengua).
• Los pares V, VII, IX y X son mixtos.
• Los pares III, VII, IX y X llevan fibras parasimpaticas
GRADO 0 GRADO 1 GRADO 2 GRADO 3
Escala de Glasgow 15 14-15 9-13 < 9
Pérdida de conciencia No Transitoria -- --
Funciones superiores Normal Alteradas -- --
Amnesia No Si -- --
Cefaleas No Si -- --
Vómitos No Si -- --
Agitación No Si -- --
Fractura craneal No Si -- --
Convulsión No No Si --
Focalidad No No Si --
----- ----- --------
Rx de craneo AP y L Si Si -- --
Rx cervical L Si* Si* Si Si
TAC No Si** Si Si
C. Neurocirugía No Si deterioro Si Si
Monitorización PIC No No Algunos Si
----- ----- -------
Alta Si --- -- --
Ingreso en Observación No Si, 24 h. Si, 24 h. --
Ingreso en planta No Si lesión TAC Tras observación --
Ingreso en UCI No --- Si LOE Si
DEFINICIÓN.
Todo impacto craneal aparentemente leve con probabilidad de deteriorarse
neurológicamente en las primeras 48 horas postraumaticas.
EPIDEMIOLOGÍA.
• Riesgo de complicaciones neurológicas graves enTCE leves: 1-3%
• 10% de los TCE finalmente graves pudieron hablar despues del
accidente.
• FACTORES QUE PUEDEN INCREMENTAR LA GRAVEDAD DE UN TCE.
–Variables clínicas. El elemento determinante en la mayor o menor
gravedad del TCE es la presencia o ausencia de
lesión intracraneal traumatica.
a. - Mecanismo lesional.
Las caidas presentan mayor riesgo de hematoma que otros
mecanismos lesionales.
b. - Edad.
• El porcentaje de hematomas en TCE leves es 2-3 veces mayor en adultos
que en niños.
• En mayores de 60 años se incrementa incluso hasta 10 veces
mas el riesgo de deterioro neurológico.
c. - Pérdida transitoria de conciencia.
Multiplica el riesgo relativo por 2, y es independiente de
las anormalidades observadas en la TAC.
d. - Amnesia y Agitación.
• Si la amnesia es mayor de 5 minutos se asocia a un riesgo de deterioro
neurológico de 3 %.
• La probabilidad de lesión intracraneal si coexisten amnesia y
agitación alcanza el 60%.
• La agitación aislada conlleva una probabilidad del 16 % de
lesión intracraneal.
e. - Cefaleas y vómitos.
Estan ligados también al riesgo de deterioro
neurológico.
f. - Nivel de conciencia.
Es el mas destacado utilizandose para clasificar la gravedad del TCE.
• TCE GRAVE:
Electroforesis en gel de campo pulsatil: Un
tipo de electroforesis en gel en el que la orientación del campo eléctrico se cambia
periódicamente. Esta técnica permite separar moléculas de
DNA muy grandes, de un tamaño que llega a ser
el de cromosomas enteros.
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